ICS67.050
X04T/SDAQI
团 体 标 准
T/SDAQI041—2021
水果和蔬菜中氯虫苯甲酰胺残留量的测定
液相色谱-串联质谱法
Determinationofchlorantraniliproleresiduesinfruitandvegetablebyliquid
chromatography-tandemmassspectrometrymethod
2021-09-25发布 2021-10-25实施
山东质量检验协会 发布
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I版权说明
本文件系由山东质量检验协会(简称“协会”)组织创制的团体标准文本(含制定过程中的草案),
协会拥有本文件的著作权,受《中华人民共和国著作权法》保护。除法律所允许的情形或事先得到协会
书面许可外,任何组织和个人不得以任何理由进行复制、销售、传播本文件,或抄袭、歪曲本文件等侵
权行为,否则,行为人应承担相应的民事、行政责任,构成犯罪的,将依法追究其刑事责任。其他文件
引用本文件,不属侵权行为。
凡利用本文件进行或支持贸易、认证等商业活动,应事先购买正式文本或得到协会书面授权。购买
本文件或获得授权,请与协会联系。
欢迎社会各界举报侵权盗版行为,协会将依法严格保护举报人信息。
联系人:范红梅
联系电话:0531-8970198615668365153
联系邮箱:
[email protected]
协会对本版权声明拥有最终解释权。
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II前言
本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定
起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由山东质量检验协会提出、归口并组织实施。
本文件起草单位:山东省产品质量检验研究院、滨州市食品药品检验检测中心。
本文件主要起草人:侯广月、颜士忠、王颖臻、徐志娇、李丽、周莉莉、凡书杰、李大为、曹世源、
李杜慧、刘忠强、李娜、高会兰、韩叶、刘丽洁。
本文件的所有权和解释权归山东质量检验协会。
如果您在本文件使用中发现错误或技术内容有不当之处,请及时与协会秘书处联系,将意见发送到
[email protected]。
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1水果和蔬菜中氯虫苯甲酰胺残留量的测定液相色谱-串联质谱法
1范围
本文件规定了水果和蔬菜中氯虫苯甲酰胺残留量的液相色谱-串联质谱测定方法。
本文件适用于苹果、桃、葡萄等水果和甘蓝、茄子、豆角等蔬菜中氯虫苯甲酰胺残留量的测定。
本文件的方法定量限为0.001mg/kg。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量
3术语和定义
本文件没有需要界定的术语和定义。
4原理
试样经乙腈提取,提取液经固相萃取柱净化,用液相色谱-串联质谱仪测定,外标法定量。
5试剂
除非另有说明,在分析中仅使用确认为分析纯的试剂和符合GB/T6682规定的一级水。
5.1乙腈(CH3CN):色谱纯。
5.2乙酸铵(CH3COONH4):色谱纯。
5.3甲酸(HCOOH):色谱纯。
5.4氯化钠(NaCl)。
5.5氯虫苯甲酰胺标准品(CAS号:500008-45-7),纯度不低于99.0%,或经国家认证并授予标准物
质证书的标准物质。
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25.6氯虫苯甲酰胺标准储备溶液:称取适量氯虫苯甲酰胺标准品(精确至0.1mg),用乙腈(5.1)溶
解配制成浓度为1.0mg/mL的标准储备溶液,-18℃冷冻避光保存,有效期6个月。
5.7氯虫苯甲酰胺中间标准溶液:吸取适量氯虫苯甲酰胺标准储备溶液用乙腈(5.1)稀释配制成10μ
g/mL的中间标准溶液,-18℃冷冻避光保存,有效期1个月。
5.8氯虫苯甲酰胺标准工作溶液:将氯虫苯甲酰胺中间标准溶液用空白试样基质溶液稀释成0.50
ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、10.00ng/mL、20.00ng/mL、50.00ng/mL的系列标准工作溶液,
使用前配制。
5.9亲水微孔滤膜:0.22μm。
5.10固相萃取柱:OasisPrimeHLB(150mg),或相当者。
5.11离心管:50mL,15mL。
6仪器和设备
6.1液相色谱-串联质谱仪:配有电喷雾离子源。
6.2分析天平:感量分别为0.1mg和0.01g。
6.3涡旋混合器。
6.4组织粉碎机。
6.5离心机:转速不低于6000r/min。
7试样制备
从原始样品中取出代表性样品约500g,取样部位按GB2763附录A执行,用组织粉碎机粉碎,混匀,
装入洁净的容器内,密封并标明标记。-18℃以下冷冻保存。
8试验步骤
8.1提取
称取10g(精确至0.01g)试样于50mL离心管中,加入5g氯化钠,再加入20mL乙腈,涡旋
混匀后,6000r/min离心5min,上清液待净化。
8.2净化
取3mL上清液过PrimeHLB固相萃取柱,收集净化液,净化液经微孔滤膜过滤后上机测定。
8.3仪器参考条件
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38.3.1液相色谱参考条件
色谱柱:Poroshell120EC-C18,2.7μm,100mm×2.1mm(内径),或相当者;
流动相:A相为0.1%甲酸水溶液(含5mmol/L乙酸铵),B相为乙腈,梯度洗脱程序见表1;
流速:0.3mL/min;
柱温:35℃;
进样体积:5μL。
表1流动相梯度洗脱程序
时间,min A相,% B相,%
0.00 95.00 5.00
2.00 95.00 5.00
6.00 5.00 95.00
8.00 5.00 95.00
8.10 95.00 5.00
10.00 95.00 5.00
8.3.2质谱参考条件
离子源:电喷雾离子源;
扫描方式:正离子扫描;
检测方式:多反应监测;
其他质谱参考条件参照附录A。
8.4定性测定
在8.3设定的仪器条件下测定试样和标准工作溶液,如果试样中待测物质的色谱峰保留时间与标准
工作溶液一致,偏差在±2.5%以内,定性离子对的相对丰度与浓度相当的标准工作溶液相比,相对丰度
偏差不超过表2中规定的范围,则可判断试样中存在对应的待测物。
表2定性确证时相对离子丰度的最大允许偏差
相对离子丰度/% >50 >20~50 >10~20 ≤10
允许的相对偏差/% ±20 ±25 ±30 ±50
8.5定量测定
在8.3设定的仪器条件下测定标准工作溶液,以峰面积为纵坐标,标准工作溶液浓度为横坐标绘制
标准工作曲线,用标准工作曲线对试样进行定量。试样溶液中待测物的响应值均应在仪器测定的线性范
围内。标准物质的多反应监测色谱图参见附录B。
8.6平行试验
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4按上述规定对同一试样进行平行试验测定。
8.7空白试验
除不加试样外,均按上述测定条件和步骤进行。
9试验数据处理
试样中氯虫苯甲酰胺的含量按式(1)计算:
mVc
1000X ........................(1)
式中:
X—试样中氯虫苯甲酰胺的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
c—由标准工作曲线得到的试样溶液中氯虫苯甲酰胺的浓度,单位为纳克每毫升(ng/mL);
V—试样提取溶液的体积,单位为毫升(mL);
m—试样质量,单位为克(g);
1000—由μg/kg转换为mg/kg的换算因子;
计算结果应扣除空白值,以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,结果保留3
位有效数字。
10回收率和精密度
方法的回收率和精密度的试验数据见附录C。
11灵敏度
本方法的定量限为0.001mg/kg。
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5A
附录A
(资料性)
参考质谱条件
参考质谱条件如下:
a)干燥气温度:300℃
b)干燥气流量:7L/min
c)雾化气压力:35psi
d)鞘气温度:325℃
e)鞘气流量:12L/min
f)毛细管电压:4500V
其他质谱参数见表A.1
表A.1氯虫苯甲酰胺的质谱参数
化合物 监测离子 驻留时间(ms) 碰撞能量(eV)
氯虫苯甲酰胺484.1>285.9* 50 13
484.1>453.0 50 17
注:*表示定量分析的离子对;对于不同质谱仪器,仪器参数可能不同。
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6附录B
(资料性)
A
氯虫苯甲酰胺多反应监测(MRM)色谱图
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7附录C
(资料性)
表C.1水果和蔬菜中氯虫苯甲酰胺的回收率结果(n=6)
基质加标水平(0.001mg/kg) 加标水平(0.01mg/kg) 加标水平(0.05mg/kg)
平均回收率/% RSD/% 平均回收率/% RSD/% 平均回收率/% RSD/%
苹果 86.3 4.16 84.3 4.74 83.7 3.04
桃 81.7 2.12 83.5 2.80 82.3 2.11
葡萄 84.0 2.59 87.4 3.08 84.3 2.95
柑橘 84.6 3.26 85.5 4.03 88.2 2.60
番茄 91.9 3.57
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